文章背景簡介

耐熱的漢遜酵母Ogataea polymorpha是一種具有基礎(chǔ)研究和應(yīng)用價值的微生物。它已成為研究甲醇利用、細胞自噬、硝酸同化的重要有機體。它的一個吸引人的特性是能夠通過非同源末端連接（NHEJ）將多達100個目標拷貝基因整合到基因組中。此外，它可以利用人體低聚糖合成糖蛋白，還可以在高達50℃的溫度下生長，從而可降低工業(yè)發(fā)酵昂貴的冷卻成本。

CRISPER－Cas9輔助基因組編輯技術(shù)的研究進展為建立多重基因組工程提供了一種有效的途徑。其基本原理是：反式激活crRNA：crRN雙鏈直接引導Cas9蛋白與目標DNA序列結(jié)合，然后Cas9蛋白在PAM上游的三個核苷酸中產(chǎn)生雙鏈斷裂（DSB）。DSB可以通過非同源末端連接插入或修復(fù)，也可以通過同源重組來進行精準編輯，如基因敲除，點突變等。

核糖體DNA（rDNA）是編碼核糖體RNA的DNA序列。在酵母中，rDNA通常由大量的相同重復(fù)序列組成。在O． polymorpha中，rDNA包含50－60個8kb的重復(fù)單元。在釀酒酵母（S． cerevisiae）中，rDNA位點由150－200個重復(fù)序列組成，重復(fù)序列為9．1kb。近年來，rDNA重復(fù)序列已成為一些酵母菌多拷貝基因整合的目標位點。

2018年6月，中國科學院微生物學研究所病原微生物學與免疫學重點實驗室的Laiyou Wang等人，在《Biotechnology for Biofuels》雜志（IF2018＝5．497；工程技術(shù) 1區(qū)）發(fā)表了題為“Efficient CRISPR－Cas9 mediated multiplex genome editing in yeasts”的文章。

所用到的主要方法

1．活細胞的制備及轉(zhuǎn)化

2．質(zhì)粒構(gòu)建和模板編輯

3．編輯效率計算：

編輯效率＝所需突變體數(shù)目／總被測菌落數(shù)

4．流式細胞儀分析

5．基因拷貝數(shù)估計

6．穩(wěn)定性檢測

7．搖瓶發(fā)酵

8．產(chǎn)品濃度分析：HPLC

文章主要內(nèi)容摘要

在本研究中，作者發(fā)展了一種CRISPR－Cas9輔助多重基因組編輯（CRISPR–Cas9－assisted multiplex genome editing，CMGE）方法，包括多重基因敲除、多位點（ML）和多拷貝（MC）整合方法。在CMGE的基礎(chǔ)上，對漢遜酵母（O．polymorpha）進行了基因敲除、整合和精確點突變等基因組修飾。采用CMGE－ML整合方法，在白藜蘆醇生物合成途徑三個不同的位點同時整合 橙色滑柱菌（Herpetosiphon aurantiacus）的酪氨酸解氨酶（TAL）基因，擬南芥的4－香豆酰CoA連接酶（4CL）基因和釀酒葡萄的芪合酶（STS）基因，成功實現(xiàn)白藜蘆醇在O． polymorpha內(nèi)的生物合成。采用CMGE－MC方法，將不同拷貝數(shù)的融合基因表達盒Psctef1－TAL－Psctpi1－4CL－Psctef2－STS整合到基因組中，白藜蘆醇產(chǎn)量比單拷貝整合提高了20倍，達到97．23±4．84 mg／L。此外，本研究還利用CMGE－MC技術(shù)分別整合了人血清白蛋白（HSA）和大腸桿菌賴氨酸脫羧酶（cadA）基因，實現(xiàn)了人血清白蛋白和尸胺的生物合成。除漢遜酵母外，本研究還在釀酒酵母內(nèi)也成功地建立了 CMGE－MC方法。CMGE方法為O． polymorpha和其他酵母的基因工程和合成生物學研究提供了一個有效的工具。

在釀酒酵母中同步敲除多基因的CRISPR－Cas系統(tǒng)